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Kit de teñido Masson

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Descripción general

Descripción del producto la tinción Masson es uno de los métodos de teñido utilizados para mostrar las fibras en los tejidos y es un método técnico clásico para teñir las fibras de colágeno. Se aplica principalmente al análisis diferencial del colágeno y el músculo liso. Se utiliza ampliamente en la investigación del tejido conjuntivo, el tejido muscular y el colágeno. El kit de teñido beibotm bbcellprobetm Masson utiliza diferentes tintes aniónicos para completar el teñido sucesivamente, de acuerdo con las diferentes permeabilidad del tejido, se seleccionan tintes aniónicos de diferentes tamaños moleculares para teñir, distinguiendo los diferentes componentes del tejido. El pequeño peso molecular es fácil de penetrar en tejidos con estructura densa y baja permeabilidad; El peso molecular grande, por su parte, solo puede entrar en tejidos con estructura suelta y alta permeabilidad. El azul Anilina tiene un gran peso molecular, por lo que las fibras musculares son rojas después de la Tinción de Masson y las fibras de colágeno son azules (azul anilina), que se utilizan principalmente para distinguir las fibras de colágeno de las fibras musculares. Operación simple, rendimiento estable y color claro.

Detalles del producto

Temperatura de conservación
2 - 8 ° C para evitar la luz
Precauciones
1. el período de validez es el período de validez que se conserva en las condiciones requeridas antes de que el kit no se desbloquee.
¡2. ¡ por favor, use el reactivo lo antes posible después de desbloquearlo!
Período de validez
un año
Método de detección
microscopio
Muestras aplicables
1. secciones de parafina
2. secciones congeladas
Preparación del instrumento
1. microscopio
2. incubadora de 37 ° C
3. Pipeta
4. refrigerador
5. caja de hielo
Preparación del reactivo
1. solución de fijación: elija una solución de formaldehído o sal de formaldehído
2. agua destilada
3. serie de etanol
Preparación de consumibles
1. tubo centrífuga
2. succión
3. guantes desechables
Precauciones de uso
1. mezcle A1 y A2 en la misma cantidad para teñir el líquido de cicatrización de hierro weigert, que generalmente pierde su capacidad de teñido a las 24 horas.
2. mantenga las láminas húmedas en cada paso de teñido.
3. el desparafinado de las rebanadas debe estar lo más limpio posible.
4. la fijación juega un papel importante, y el uso de diferentes líquidos de fijación puede prolongar o acortar el tiempo de teñido.
5. el tiempo de diferenciación del reactivo B debe ser diferente según el grosor de la sección y el tipo de tejido.
6. al diferenciar el ácido fosfomolídeo del reactivo f, debe controlarse bajo el microscopio y diferenciarse hasta que la fibra de colágeno sea de color rojo pálido y la fibra sea roja. El tiempo de diferenciación depende de la profundidad de la tinción, generalmente de 1 a 2 min.
7. si el color azul de la parte de la fibra de colágeno es demasiado claro durante la observación microscópica, se puede volver a teñir con una solución de teñido durante 2 - 3 minutos hasta que el color sea adecuado. El tiempo de teñido del redescuento no debe ser demasiado largo, y si el color es demasiado oscuro, el contraste no será Fuerte.
8. si el efecto general de teñido no es bueno, se puede remojar en agua durante 60 - 90 minutos, y después de desvanecerse, repetir el teñido.
Modo de empleo
Preparación del reactivo:
La mezcla homogénea de A1 y A2 antes del uso temporal es el tinte a, que se utiliza dentro de las 24 horas y no se puede preparar de antemano.

Tratamiento previo al teñido de la muestra:
Sección de parafina
1. desparafinado: desparafinado en xileno durante 10 - 15 minutos. Vuelva a usar xileno fresco para desparafinar durante 10 - 15 minutos.
2. remoje la película desparafinada en etanol 95% durante 2 minutos, y luego use etanol 70% y 30% durante 2 minutos cada uno.
3. hidratación: remojar en agua destilada durante 2 minutos.
4. enjuague: enjuague dos veces con agua a 30 - 40 ° c, 30 - 60 segundos cada vez.

Teñido de la muestra
1. humedecer las pastillas de vidrio con agua destilada durante 30 - 60 segundos.
2. teñir con una solución de teñido recién preparada a durante 5 - 10 minutos.
3. el líquido de separación B se divide en 6 - 8 minutos. Lavar con agua.
4. el reactivo C se trata durante 2 - 3 minutos.
5. lavar con agua destilada durante 1 - 2 minutos.
6. teñir el líquido de teñido D durante 5 - 10 minutos.
7. preparar una solución de trabajo de ácido débil de acuerdo con el agua destilada: ácido débil e = 2: 1 y lavarla con una solución de trabajo de ácido débil durante 1 minuto.
8. lavar el reactivo F durante 1 - 2 minutos. Es necesario observar bajo el espejo y tratar con el rojo pálido de la ciudad de fibra de colágeno; El rojo de fibra está bien.
9. lavar con una solución de trabajo de ácido débil durante 1 minuto.
10. teñido con solución de teñido G Anilina azul durante 1 - 2 minutos.
11. lavar con una solución de trabajo de ácido débil durante 1 minuto.
12. el 95% del etanol se deshidrata rápidamente.
13. deshidratación de etanol anhidro 3 veces, 5 segundos cada vez.
14. el xileno es transparente 3 veces, 1 minuto cada vez.
15. sellar con un agente de sellado.
16. observación de resultados.

Resultados:
El núcleo, la fibra de colágeno, el moco y el cartílago son azules;
El plasma, los músculos, los glóbulos rojos, la celulosa y el colágeno nervioso son rojos.

Referencias
1. Yuyan Lu y col.
El valsartán atenua la hipertensión pulmonar mediante la supresión de la señalización de proteína quinasa activada por mitógeno y la expresión de metaloproteinasa de matriz en roedores.
Informes de Medicina Molecular 2017

2. Fei Hou, et al.
Atenuación de la fibrosis hepática por el compuesto herbal 861 mediante la regulación ascendente de la señalización BMP-7/Smad en la rata modelo de ligación del conducto biliar
Informes de Medicina Molecular 2016

3. Huikuan Gao y col.
Cambios secuenciales en la autofagia en la fibrosis cardíaca diabética
Informes de Medicina Molecular 2015